黄芩提取物对H22移植瘤小鼠的影响

发布时间:2022-04-02 11:18:05   来源:作文大全    点击:   
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u+ytrz{bǫfej赦ʷǝjfzzڕhrhs+^*'r[r^VZv,^r!jnƧ+n}'mVmj+yqv^,^!jxɚɷh(!ay֦j~z+m.yqe~&騭jw材料

1.1 动物及细胞株

SPF级2月龄昆明种小鼠72只,雌雄各半,体质量(20±2)g,甘肃中医药大学实验动物中心,合格证号SCXK(甘)2011-0001。小鼠肝癌H22瘤株,中国医学科学院药物研究所。

1.2 药物

2年生黄芩根,11月初采自甘肃陇西,经甘肃中医药大学杜弢教授鉴定为唇形科植物黄芩Scutellaria baicalensis Georgi的干燥根。将黄芩用蒸馏水洗净后切片,置于烘箱(40 ℃)烘干至恒重,研碎后过60目筛备用。70%乙醇加热回流3次,每次回流2 h,将3次提取液合并浓缩至无醇味,再用蒸馏水调至1∶1浓度,4 ℃冰箱保存。分光光度法测得黄芩总黄酮含量为19.48%。氟尿嘧啶注射液(5-Fu),规格:250 mg/10 mL,上海旭东海普药业有限公司,批号20131210。

1.3 试剂

考马斯亮蓝、总抗氧化能力(T-AOC)、超氧化物歧化酶(SOD)、丙二醛(MDA)试剂盒,南京建成生物工程研究所;正常熔点的琼脂糖、低熔点的琼脂糖,美国Sigma公司;台盼蓝、三羟甲基氨基甲烷、二甲基亚砜、溴化乙锭均为国产分析纯。

1.4 仪器

DYY-Ⅲ型电泳仪,北京六一仪器厂;CKX41-F32FL荧光倒置显微镜,日本奥林巴斯公司;VIS-723N型紫外可见分光光度计,北京瑞利分析仪器有限公司。

2 实验方法

2.1 H22移植瘤模型制备

常规方法复苏H22小鼠肝癌细胞,取0.2 mL细胞悬液注射到小鼠腹腔内,连续传2代。无菌操作取第2代腹水,0.4%台盼蓝染色,计数活细胞率>90%,再用无菌生理盐水稀释,调整细胞密度为1×107个/mL,取0.2 mL瘤细胞悬液接种到60只昆明种小鼠的右前肢腋窝皮下。

2.2 分组及给药

接种后第2日,将60只小鼠,雌雄各半,随机分为模型组、5-Fu组和黄芩提取物低、中、高剂量组,每组12只。另取12只正常小鼠设为对照组。黄芩提取物低、中、高剂量组每日分别以50、100、200 mg/kg剂量给予小鼠黄芩提取物灌胃,每日1次;5-Fu组按25 mg/kg剂量隔日灌胃给药1次;对照组和模型组每日给予0.2 mL/10 g生理盐水灌胃。每日记录小鼠的活动状况及体质量变化。连续10 d。

2.3 检测指标

末次给药后,禁食不禁水16 h,各组小鼠称重,摘眼球取血,脱颈处死小鼠。

2.3.1 抑瘤率和脏器指数测定 剖取瘤块,生理盐水洗净表面残血,称重,计算抑瘤率[(模型组平均瘤质量-给药组平均瘤质量)÷模型组平均瘤质量×100%]。剖取胸腺和脾脏,生理盐水洗净表面残血,用滤纸吸干,电子天平称重,计算脏器指数。脏器指数=脏器质量÷体质量。

2.3.2 血清总抗氧化能力、超氧化物歧化酶活性及丙二醛含量测定 分离血清,4 ℃冷藏保存,用于T-AOC、SOD活性、MDA含量的测定。SOD活性测定采用黄嘌呤氧化酶法;MDA含量测定采用硫代巴比妥酸法(TBA)法;比色法检测血清T-AOC,组织蛋白含量测定采用考马斯亮蓝法,具体测定流程按试剂盒说明书进行。

2.3.3 外周血淋巴细胞DNA损伤检测 采用单细胞凝胶电泳法,具体流程参照Singh等[5]描述的方法稍加改进,选择尾长、尾矩、Olive尾矩为DNA损伤指标。

3 统计学方法

采用SPSS13.0统计软件进行分析。实验数据以—x±s表示,组间比较采用方差分析。P<0.05表示差异有统计学意义。

4 结果

4.1 黄芩提取物对移植瘤小鼠肿瘤生长的影响

与模型组比较,不同剂量黄芩提取物对肝癌H22移植瘤小鼠瘤质量均有一定的抑制作用,其中黄芩提取物中、高剂量组抑瘤作用显著(P<0.01);黄芩提取物各剂量组小鼠瘤质量均明显高于5-Fu组(P<0.01),黄芩提取物各剂量组抑瘤率均低于5-Fu组。结果见表1。

4.2 黄芩提取物对移植瘤小鼠体质量及免疫器官指数的影响

与模型组比较,实验末期5-Fu组小鼠体质量明显下降(P<0.01),黄芩提取物中、高剂量组小鼠体质量则有所增加,黄芩提取物中、高剂量组小鼠胸腺和脾脏指数明显升高(P<0.05,P<0.01),5-Fu组小鼠胸腺指数和脾脏指数明显降低(P<0.01),也明显低于黄芩提取物中、高剂量组(P<0.01)。结果见表2。

4.3 黄芩提取物对移植瘤小鼠血清抗氧化指标的影响

与对照组比较,模型组、5-Fu组、黄芩提取物各剂量组小鼠血清T-AOC均明显降低(P<0.01);与模型组比较,黄芩提取物中、高剂量组小鼠血清T-AOC明显升高(P<0.01),而5-Fu组小鼠血清T-AOC明显降低(P<0.01)。模型组、5-Fu组、黄芩提取物各剂量组小鼠血清SOD活性均低于对照组,其中模型组、5-Fu组、黄芩提取物低剂量组与对照组比较差异显著(P<0.01);黄芩提取物各剂量组小鼠血清SOD活性均高于5-Fu组,其中中、高剂量组差异有统计学意义(P<0.01)。与对照组比较,模型组、5-Fu组、黄芩提取物各剂量组小鼠血清MDA含量均明显升高(P<0.01),黄芩提取物中、高剂量组血清MDA含量明显低于模型组(P<0.01)。结果见表3。

4.4 黄芩提取物对移植瘤小鼠外周血淋巴细胞DNA损伤的影响

与对照组比较,模型组、5-Fu组、黄芩提取物各剂量组小鼠外周血淋巴细胞DNA尾长、尾矩、Olive尾矩均增加,除黄芩提取物高剂量组DNA尾长外,其余各组差异均有统计学意义(P<0.01);与模型组比较,黄芩提取物中、高剂量组小鼠外周血淋巴细胞DNA尾长、尾矩、Olive尾矩均明显降低(P<0.01),而5-Fu组小鼠外周血淋巴细胞DNA尾长、尾矩、Olive尾矩则明显升高(P<0.01)。结果见表4。

5 讨论

恶性肿瘤是一类危害人类健康的常见疾病,居人类疾病病死率的第1位。在肿瘤疾病的治疗中,化疗可改善临床症状,提高生存质量及延长生命。化疗药物在杀死大量肿瘤细胞的同时,对机体的正常组织和细胞也有不同程度的损伤作用,主要表现在可引起免疫器官萎缩、免疫功能减退、造成正常淋巴细胞大量减少、产生一定的细胞毒性等。因此,在最大限度杀灭肿瘤细胞的同时,修复或增强机体的免疫功能,减轻对正常组织和细胞毒害作用,是治疗肿瘤的关键所在。

本实验结果表明,不同剂量黄芩提取物对小鼠H22肝癌移植瘤生长均有明显抑制作用,黄芩提取物的抑瘤作用弱于5-Fu;但不同的是,5-Fu组小鼠体质量明显减轻,胸腺指数和脾脏指数显著下降,而黄芩提取物中、高剂量组体质量、胸腺指数和脾脏指数下降不明显,表明黄芩提取物用药安全性较好。黄芩提取物中、高剂量组小鼠胸腺指数和脾脏指数显著高于模型组,表明黄芩提取物中、高剂量能够在一定程度上改善肿瘤对机体免疫器官的伤害,修复或增强小鼠的免疫功能。

研究表明,自由基产生和消除失衡与肿瘤发生、发展关系密切。当机体处于肿瘤的发生、发展等病理过程中,机体抗氧化能力减弱,自由基产生速度超过了机体清除的能力,机体内累积过多的自由基可直接损伤DNA,也可通过脂质过氧化产物间接损伤DNA。当DNA损伤累积到一定程度后可导致细胞功能改变、基因毒性及肿瘤启动等多种损伤[6-8]。本实验结果显示,模型组小鼠血清T-AOC、SOD活性显著降低,MDA含量显著升高,外周血淋巴细胞DNA尾长、尾矩、Olive尾矩明显增加,表明肿瘤的发生对机体造成了氧化损伤。给予中、高剂量黄芩提取物后,移植瘤小鼠T-AOC、SOD活性明显升高,MDA含量显著降低,外周血淋巴细胞DNA尾长、尾矩、Olive尾矩明显降低,提示黄芩提取物中、高剂量可改善或提高机体的抗氧化能力,以清除体内过多产生的自由基,进而保护淋巴细胞DNA结构的稳定。

综上所述,黄芩提取物具有明显的抗肿瘤作用,其作用机制可能与减轻或改善肿瘤细胞对机体正常组织细胞的伤害、修复或增强小鼠的免疫功能及提高机体抗氧化损伤能力有关。与常规化疗药物相比,黄芩提取物在一定剂量下对小鼠无明显不良影响,是其优势所在。然而肿瘤的形成和发展十分复杂,涉及多个脏器,多种生化指标的改变,单纯依靠黄芩提取物治疗,并不能完全控制肿瘤的生长,是否可以将黄芩提取物与化疗、放疗联用,以增强对肿瘤的控制效果,延长移植瘤小鼠生存时间,还有待进一步探讨。

参考文献:

[1] 李韦,杨伟鹏,梁日欣,等.栽培黄芩和野生黄芩抗炎、解热和免疫作用比较研究[J].中国实验方剂学杂志,2009,15(1):29-31.

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[3] 杨艳,梁日欣,杨滨,等.黄芩等5种中药醇提物的抗脂质过氧化作用研究[J].中国实验方剂学杂志,2009,15(9):46-48.

[4] Du G, Han G, Zhang S, et al. Baicalin suppresses lung carcinoma and lung metastasis by SOD mimic and HIF-1α inhibition[J]. Eur J Pharmacol,2010,630(1/3):121-130.

[5] Singh NP, McCoy MT, Tice RR, et al. A simple technique for quantitation of low levels of DNA damage in individual cells[J]. Exp Cell Res,1998,175:184-191.

[6] 沈明花,李巍,金梅花,等.小黄蘑多糖对H22荷瘤小鼠的抗肿瘤作用研究[J].中草药,2013,44(17):2433-2436.

[7] Kirkland DJ, Hayashi M, Jacobbon-kram D, et al. Summary of major conclusion from the 4th IWGT, San Francisco, 9-10 September[J]. Mutat Res-Gen Tox En,2007,627(1):5-9.

[8] 李小曼,徐红德,蔺美娜,等.DNA损伤修复反应的双刃剑效应在肿瘤与衰老发生发展中的作用[J].中国细胞生物学学报,2013,35(2):134- 140.

(收稿日期:2015-01-23)

(修回日期:2015-02-12;编辑:华强)